Please use this identifier to cite or link to this item: http://cmuir.cmu.ac.th/jspui/handle/6653943832/77833
Full metadata record
DC FieldValueLanguage
dc.contributor.advisorSuwit Duangmano-
dc.contributor.authorRattana Kongtaen_US
dc.date.accessioned2022-11-05T09:35:26Z-
dc.date.available2022-11-05T09:35:26Z-
dc.date.issued2021-03-
dc.identifier.urihttp://cmuir.cmu.ac.th/jspui/handle/6653943832/77833-
dc.description.abstractMutations of nucleophosmin1 (NPM1) gene represent the most frequent molecular alteration in acute myelogenous leukemia (AML), especially in the AML patients with normal karyotype. These alterations have been shown to carry favorable prognostic significance in AML because their clinical importance in terms of risk assessment and treatment decision ns in AML patients. Several methods have been developed for detection of NPM gene mutations. However, most of which are expensive, technically challenging, complicated, and require additional laboratory equipment that is not available in some laboratories with limited resources. More importantly, their inability to detect low levels of mutations in a wild-type background is limited. In this study, E-ice-COLD-PCR assay combined with HRM analysis for NPMI gene mutations detection were developed and validated for highly specific, short time-to-result, and sensitive screening for detection of NPMI gene mutations with easier result interpretations. Blood samples from 23 patients who were diagnosed with AML at Maharaj Nakorn Chiang Mai hospital were collected and then DNAs were extracted. For mutational analysis, E-ice-COLD-PCR assay for detection of NPMI gene mutations was developed that cover 4 mutation types (type A, B, D, and J). These four types are the most prevalent mutations found in Thailand. PCR products were then analyzed by HRM analysis and detected NPMI gene mutations using 2% agarose gel electrophoresis. All of positive samples were confirmed by direct sequencing in both directions. The E-ice-COLD-PCR assay with HRM analysis enabled detection specificity and sensitivity of NPMI mutations in 2/23 AML patients. The specificity was confirmed in the positive samples by direct sequencing analysis and the results were 100 % concordant with this method. In addition, the limit of detection (LOD) was 12.5% mutant in final concentration of 5 ng genomic DNA. This study concluded that E-ice COLD-PCR assay with HRM analysis is highly specific and sensitive screening method for enrichment of detecting NPMI gene mutations. This method is short time-to-results and easier interpretation of the results. Moreover, performing E-ice-COLD-PCR prior to direct sequencing allows substantially increasing the limit of detection of direct sequencing. In addition, E-ice-COLD PCR protocol can easily be integrated in the routine molecular diagnosis of AML using standard laboratory equipment.en_US
dc.language.isoenen_US
dc.publisherChiang Mai : Graduate School, Chiang Mai Universityen_US
dc.titleDevelopment of COLD-PCR assay combined with HRM analysis for nucleophosmin1 gene mutation detection in acute myelogenous leukemiaen_US
dc.title.alternativeการพัฒนาวิธีโคลด์พีซีอาร์ร่วมกับการวิเคราะห์เอชอาร์เอ็มสำหรับตรวจหาการกลายพันธุ์ของยีนนิวคลีโอฟอสมิน1 ในมะเร็งเม็ดเลือดขาวเฉียบพลันชนิดมัยอีลอยด์en_US
dc.typeThesis
thailis.controlvocab.lcshMutation (Biology)-
thailis.controlvocab.lcshOncogenes-
thailis.controlvocab.lcshLeukemia -- Genetic aspects-
thesis.degreemasteren_US
thesis.description.thaiAbstractการกลายพันธุ์ของยืนนิวคลีโอฟอสมิน (nucleophosmin: NPM1) เป็นการเปลี่ยนแปลงในระดับ โมเลกุลที่พบมากที่สุด ในโรคมะเร็งเม็ดเลือดขาวเฉียบพลันชนิดมัยอีลอยด์ (AML) โดยเฉพาะในผู้ป่วยที่มีจำนวนและลักษณะโครโมโซมปกติ (normal karyotype) บอกจากนี้ยังพบว่าการกลายพันธุ์ ของยีน NPM1 ยังเป็นตัวบ่งชี้ที่ดีสาหรับการพยากรณ์ โรคมะเร็งเม็ดเลือดขาวเฉียบพลันชนิดมัยอีลอยด์ การตรวจพบการกลายพันธุ์ของยีนจึงมีความสำคัญในการพยากรณ์ความเสี่ยงและการตัดสินใจของ แพทย์ในการวางแผนการรักษาผู้ป่วยไรคมะเร็งเม็ดเลือดขาวเฉียบพลันชนิดมัยอีลอยด์ ในปัจจุบันมี หลายวิธีที่ใช้สำหรับการตรวจหาการกลายพันธุ์ของน NPM1 แต่วิธีดังกล่าวมีราคาแพง มีขั้นตอนการ ทำที่ซับซ้อน ต้องอาศัยผู้ที่มีความชำนาญในการทำและแปลผล และใช้เครื่องมือพิเศษเพิ่มเติมที่ไม่มี ในห้องปฏิบัติการทั่วไป และที่สำคัญไปกว่านั้นคือไม่สามารถตรวจหาการพันธุ์ของยีนในระดับต่ำได้ จากปัญหาดังกล่าว จึงทำการพัฒนาวิธีการตรวจคัดกรองการกลายพันธุ์ของยืน NPM1 ในผู้ป่วย โรคมะเร็งเม็ดเลือดขาวเฉียบพลันชนิดมัยอีลอยด์ที่ให้ความถูกต้อง มีความไว มีความจำเพาะ รวดเร็ว ราคาไม่แพง มีขั้นตอนการทำและการแปลผลที่ไม่ซับซ้อน โดยใช้เทคนิค E-ice-COLD-PCR รวมกับ การวิเคราะห์ HRM โดยทำการเก็บรวบรวมตัวอย่างสิ่งส่งตรวจประเภทเลือด (peripheral blood) จาก ผู้ป่วยที่ได้รับการวินิจฉัยว่าเป็น โรคมะเร็งเม็ดเลือดขาวเฉียบพลันชนิดมัยอีลอยด์ ณ โรงพยาบาล มหาราชนครเชียงใหม่ จำนวน 23 ราย มาทำการสกัด DNA หลังจากนั้นนำมาตรวจหาการกลายพันธุ์ ของยืน NPM1 โดยอาศัยเทคนิค E-ice-COLD-PCR ร่วมกับการวิเคราะห์ HRM ที่พัฒนาขึ้น ซึ่ง สามารถตรวจหาการกลายพันธุ์ของยืน NPM1 ได้ครอบคลุมถึง 4 ชนิด ได้แก่ การกลายพันธุ์ ชนิด A. ชนิด B, ชนิด D และ ชนิด J โดยการกลายพันธุ์ทั้ง 4 ชนิดนี้ เป็นชนิดการกลายพันธุ์ที่พบมากที่สุดใน ประเทศไทย หลังจากนั้นตรวจสอบผลิตภัณฑ์ PCR ที่ได้ด้วยการวิเคราะห์ HRM และ 2% agarose gel electrophoresis นอกจากนี้ยังทำการยืนยันผลการตรวจคัดกรองหาการกลายพันธุ์ของยีน NPM1 ที่ได้ จาก E-ice-COLD-PCR ด้วยวิธี direct sequencing ผลการทคลองพบว่าเทคนิค E-ice-COLD-PCR สามารถตรวจหาการกลายพันธุ์ของยีน NPM1 ในผู้ป่วยโรคมะเร็งเม็ดเลือดขาวเฉียบพลันชนิดมัยอี ลอยด์ได้อย่างจำเพาะ โดยตรวจพบการกลายพันธุ์ของยีนดังกล่าวในผู้ป่วย 2 ราย จากทั้งหมด 21 ราย และการตรวจยืนยันการกลายพันธุ์ของยีนดังกล่าวด้วยวิธี direct sequencing ให้ผลสอดคล้องกับการ ตรวจหาการกลายพันธุ์ด้วยเทคนิค E-ice-COLD-PCR ร้อยละ 100 นอกจากนี้ยังพบว่ามีค่าต่ำสุดที่ยัง ตรวจพบการกลายพันธุ์ได้อยู่ที่ปริมาณการกลายพันธุ์ 12.5%, ในความเข้มข้นของ DNA 5 ng ดังนั้นจึง สามารถสรุปได้ว่า วิธีการตรวจคัดกรองการกลายพันธุ์ของน NPM1 ที่พัฒนาขึ้นใหม่ โดยใช้เทคนิค E-ice-COLD-PCR ร่วมกับการิเคราะห์ HRM สามารถตรวจพบการกลายพันธุ์ของ NPM1 ในผู้ป่วย โรคมะเร็งเม็ดเลือดขาวเฉียบพลันชนิดมัยอีลอยด์ได้อย่างจำเพาะ มีความไว สามารถตรวจได้ถูกต้อง รวดเร็ว ทำได้ง่าย การแปลผลไม่ซับซ้อน และตรวจได้ทันทีหลังจากได้รับการวินิจฉัย นอกจากนี้วิธี E-ice-COLD-PCR ยังสามารถนำไปประยุกต์ใช้ในห้องปฏิบัติการที่มีข้อจำกัดในเรื่องของอุปกรณ์ หรือเครื่องมือ โดยอาศัยเครื่องมือพื้นฐานที่มีในห้องปฏิบัติการทั่วไป รวมถึงการทำ E-ice-COLD PCR ก่อนตรวจยืนยันชนิดการกลายพันธ์ด้วยวิธี direct sequencing ยังช่วยเพิ่มประสิทธิภาพของวิธี direct sequencing ได้อีกด้วยen_US
Appears in Collections:AMS: Theses

Files in This Item:
File Description SizeFormat 
611135902 รัตนา ก๋องต๊ะ.pdf5.8 MBAdobe PDFView/Open    Request a copy


Items in CMUIR are protected by copyright, with all rights reserved, unless otherwise indicated.